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 GENERALIDADES
Descripción
Distribución geográfica
Estado de conservación
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RESUMEN DE LA CONFERENCIA DICTADA EN NAKARI, SOCIEDAD JALISCIENCE DE CACTOLOGÍA, A.C., EN SESIÓN ORDINARIA DEL 27 DE ABRIL DE 2001: Publicado en: Boletín NAKARI (ISSN 1405-1613), Órgano de NAKARI, Sociedad Jalisciense de Cactología, A.C. Arias, A. A. MICROPROPAGACIÓN DE Pelecyphora strobiliformis (WEDERMANN) FRIČ ET SCHEELLE (CACTACEAE) ESPECIE MEXICANA EN PELIGRO DE EXTINCIÓN. Nakari 12 (1): 6-9. ______________________________________________________________________________
“MICROPROPAGACIÓN DE
Pelecyphora strobiliformis (WEDERMANN) FRIČ ET SCHEELLE (CACTACEAE) ESPECIE
MEXICANA EN PELIGRO DE EXTINCIÓN” ALEJANDRO ARIAS AZCONA Laboratorio de Biotecnología, Departamento de
Botánica y Zoología, Universidad de Guadalajara. Las Agujas, km 15.5 carretera
Guadalajara-Nogales, Apdo. Postal Pelecyphora strobiliformis pertenece a la gran familia de las cactáceas conformada por alrededor de 100 géneros y 1,500 especies, de las cuales cerca de 68 % están representadas en México. P. strobiliformis pertenece a la línea B strombocacti, que se encuentra conformada por 10 géneros, donde el genero Pelecyphora tiene dos especies: P. strobiliformis y P. aselliformis. La mayoría de las especies pertenecientes a esta línea se encuentran en el apéndice I de la Convención Sobre Comercio Internacional de Especies Amenazadas (CITES).
Descripción de la especie: Planta que forma pequeños
grupos; tallo
globoso de 3.5 cm de longitud y 8 cm de diámetro; ápice hundido con
lana y cerdas cortas, tubérculos numerosos, apretados de 6 mm de
longitud y 10 mm de ancho de color verde grisáceo o amarillento; espinas
solo en los tubérculos jóvenes de 10 a 12; flores en el ápice de la
planta, brota en las axilas de los tubérculos jóvenes de 3 a 3.5 cm de diámetro,
de un color purpúreo rojizo a magenta; fruto seco, escondido en la lana
del ápice; semillas pequeñas, encorvadas y aplanadas lateralmente (basado en: Bravo y Sánchez, 1991)
P.
strobiliformis
es endémica de la zona sur del Estado de Nuevo León, zona centro de Tamaulipas
y
norte del Estado de San Luis Potosí. Se le ha encontrado en altitudes
entre los 1,200 a los 1,860 msnm, en cerros y lomas de la Gran Sierra Madre
Oriental, en pendientes de 0 a 20 %, en vegetación de matorral xerófito. Su
estado de conservación según la Norma Oficial Mexicana publicada el 16 de
mayo de 1994 en el Diario Oficial de la Federación, que Determina las especies
y subespecies de flora y fauna silvestres terrestres y acuáticas raras,
amenazadas y en peligro de extinción y las sujetas a protección especial,
corresponde a la categoría P (en peligro de extinción) y al apéndice I (el
mayor grado de protección) según la CITES, asignada a las especies que no pueden ser extraídas
con fines comerciales de sus hábitats, solo se permite el comercio de plantas
propagadas y cultivas en vivero.
Al
ser una planta
de distribución restringida, lento crecimiento y difícil cultivo, es importante
plantear estrategias de conservación y propagación mediante técnicas de
cultivo de tejidos. El
objetivo del presente trabajo es establecer una técnica de micropropagación
mediante la proliferación de brotes axilares de
Pelecyphora
strobiliformis
que garantice la producción rápida
y a gran escala de plantas de calidad y su adaptación a condiciones de
invernadero.
Hartmann
y Kester, 1987,
definen a la micropropagación como la producción de plantas a partir de
porciones muy pequeñas de tejido o células cultivadas asépticamente en tubo
de ensayo o en otro recipiente en que se controlan estrictamente las condiciones
de ambiente y nutrición. Colectivamente a los métodos de micropropagación se
les ha llamado cultivo de tejidos. El método que se realizó en el presente
trabajo, fue el de producción de brotes axilares, que consiste en el cultivo aséptico
de tallos con yemas axilares, al romper la dominancia apical mediante la aplicación
de reguladores de crecimiento. Las características del método radican en
una máxima estabilidad genética, rápida obtención de plantas libres de patógenos
y la conservación de germoplasma.
Para la fase experimental se partió de plantas provenientes de semillas
donadas al Laboratorio de Cultivos y Células Vegetales por un coleccionista.
Para el establecimiento del cultivo aséptico las semillas fueron sometidas a
una desinfestación con una solución de hipoclorito de sodio (blanqueador
comercial) y agua al 50% v/v, durante 10 minutos, seguido de tres enjuagues con
agua desionizada estéril y sembradas en medio de cultivo Murashige y Skoog
(1962) (MS). Para la fase experimental se utilizaron brotes de aproximadamente 7
mm de longitud de apariencia uniforme y provenientes de cultivo sin reguladores
de crecimiento. El medio utilizado fue MS, suplementado con las vitaminas PC-L2
(Phillips y Collins, 1979), 30 gr/ l de sacarosa y pH ajustado a 5.8, junto con
la adición de diferente concentraciones y combinaciones de reguladores de
crecimiento según factoriales. Los cultivos se mantuvieron a una temperatura de
27º C (±2º), Fotoperíodo de 16 horas e intensidad lumínica de 1,000 Lux. Para la etapa de producción de brotes axilares como fuentes de citocininas se utilizaron cinetina (KIN) y 6-[γ,γ-dimetilalilamino] purina (2iP), como fuente auxina se utilizo ácido α-naftalenacético (ANA), las variables a evaluar fueron él numero de brotes por explante y la calidad de los mismos. Se elaboró un diseño experimental completamente al azar conforme a un arreglo factorial de 6 x 4 (Figura 1) con 4 repeticiones lo que dio un total de 24 tratamientos.
Figura
1. Arreglo
factorial conducido en Pelecyphora strobiliformis para la producción de brotes
axilares
con 2iP y KIN Para la etapa de producción de raíces como fuentes de auxinas se utilizaran ácido indolacético (AIA), ácido indolbutírico (AIB) ANA, las variables a evaluar son él numero de raíces por explante, su longitud y apariencia. El diseño experimental se hará conforme a un arreglo lineal de 4 tratamientos con 4 repeticiones.
Figura
2. Arreglos factoriales a conducir en Pelecyphora strobiliformis para la
producción de raíces
Para la etapa de adaptación a condiciones de invernadero los sustratos a
evaluar serán una mezcla de litonita y arena de río en proporción 1:1 y otra
mezcla de litonita, arena de río y turba en proporción 1:1:1, los explantes a
utilizar tendran raíces producidas in vitro. Las variables a evaluar
son el porcentaje de sobrevivencia a los 60 días, crecimiento en peso fresco y
apariencia. Se establecieron plantas a condiciones de invernadero como prueba preliminar, con sobrevivencia aproximada del 80 %. Bibliografía
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